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血培养瓶的采集是临床微生物检验中至关重要的环节,正确的采集方法对于提高病原菌检出率、指导临床合理用药具有重要意义。然而,在实际操作中,存在一些常见误区,可能导致血培养结果出现假阴性、假阳性。以下是血培养瓶采集方法的常见误区及分析:
一、采集前准备不足
1. 未严格消毒双手和穿刺部位
误区:操作人员未规范洗手或消毒穿刺部位,导致皮肤表面定植菌污染血培养瓶。
后果:假阳性结果增加,干扰临床判断。
正确做法:使用含酒精的消毒剂(如70%异丙醇)消毒双手,穿刺部位需用碘伏或氯己定消毒,待干后再穿刺。
2. 未评估患者状态
误区:未确认患者是否已使用抗生素,或未记录抗生素使用时间。
后果:抗生素可能抑制病原菌生长,导致假阴性。
正确做法:采集前询问抗生素使用情况,尽量在用药前或停药后6-8小时采集。
二、采集时机选择不当
1. 发热高峰期未及时采集
误区:在患者体温正常或低热时采集血培养。
后果:病原菌在血液中的浓度较低,检出率下降。
正确做法:在寒战或发热初期(体温上升期)采集,此时病原菌更易进入血液。
2. 单次采集而非多次采集
误区:仅采集一次血培养,未进行多次采集。
后果:病原菌可能间歇性入血,单次采集易漏检。
正确做法:成人应采集2-3套血培养(每套包括需氧瓶和厌氧瓶),间隔30-60分钟,24小时内完成。
三、采集量不足或过多
1. 采血量不足
误区:每瓶采血量低于推荐值(成人通常为8-10ml/瓶)。
后果:病原菌检出率下降,尤其是对于低浓度菌血症。
正确做法:确保每瓶采血量达到推荐值,儿童可根据体重调整(通常为1-3ml/瓶)。
2. 采血量过多
误区:单瓶采血量超过15ml,导致血液与培养基比例失衡。
后果:培养基被稀释,影响病原菌生长。
正确做法:严格遵循推荐采血量,避免过量。
四、采集操作不规范
1. 未更换针头或未使用专用采血针
误区:同一针头用于穿刺和注血,或使用普通注射器而非专用采血针。
后果:增加污染风险。
正确做法:使用无菌采血针,穿刺后更换针头再注血,或直接使用带针头的血培养瓶。
2. 未充分混匀血液与培养基
误区:注血后未轻轻颠倒混匀血培养瓶。
后果:血液凝固或病原菌分布不均,影响培养效果。
正确做法:注血后立即轻轻颠倒混匀5-10次,避免剧烈摇晃。
五、采集后处理不当
1. 未及时送检
误区:血培养瓶采集后未在2小时内送检,或室温放置时间过长。
后果:病原菌可能死亡或增殖受抑制。
正确做法:采集后立即送检,如无法及时送检,应置于室温(20-25℃)保存,避免冷藏或冷冻。
2. 未标注患者信息和采集时间
误区:血培养瓶未标注患者姓名、住院号、采集时间等关键信息。
后果:实验室无法识别样本,延误报告时间。
正确做法:采集后立即在血培养瓶上标注完整信息,并填写送检单。
六、其他常见误区
1. 忽视厌氧瓶的使用
误区:仅采集需氧瓶,未采集厌氧瓶。
后果:漏检厌氧菌或兼性厌氧菌。
正确做法:成人应同时采集需氧瓶和厌氧瓶,儿童可根据情况选择。
2. 过度依赖血培养
误区:将血培养作为诊断依据,忽视其他临床信息。
后果:延误诊断。
正确做法:结合患者症状、体征、影像学检查和其他实验室检查结果综合判断。
总结
血培养瓶采集的常见误区主要集中在采集前准备、采集时机、采集量、操作规范、采集后处理等方面。为提高血培养的可靠性,操作人员应严格遵循以下原则:
1. 严格消毒:确保操作环境和穿刺部位无菌。
2. 合理时机:在发热高峰期或寒战时采集,多次采集。
3. 规范采血量:确保每瓶采血量达到推荐值。
4. 规范操作:使用专用采血针,注血后充分混匀。
5. 及时送检:采集后2小时内送检,避免室温放置过久。
6. 完整标注:在血培养瓶上标注完整信息。
通过避免这些误区,可以显著提高血培养的阳性检出率,为临床诊断提供可靠依据。